琼脂糖磁珠(Magarose Beads)系列产品是医学与分子生物学研究中重要的载体工具,其粒径相对集中,表面布满丰富的羟基官能团,具有超顺磁性以及快速磁响应性等特点。
Protein G琼脂糖磁珠是由琼脂糖磁珠(Magarose Beads)与Protein G共价结合形成的复合微粒,其具有更高的抗体结合能力和较低的非特异蛋白吸附率,洗脱条件更均一,一步纯化即可从血清样品中分离出纯度大于90%的抗体。因其本身为微米级磁性微球,所以不需要离心操作,可大幅度缩短抗体吸附所需的时间。
本产品适用于血浆、腹水以及组织培养上清液等样品中的抗体纯化,也可用于抗体固定及其它相关研究。
样本处理
1. 根据样品种类选择相应的处理方法:
A. 血清样品:若目标蛋白丰度较高,建议用结合缓冲液或1×PBS(货号:PS110)稀释血清样品至目标蛋白终浓度为10~100μg/mL,置于冰上备用(或置于-20℃长期保存);
B. 悬浮细胞:离心收集细胞(4℃,500×g,10min),弃上清后称重,按每毫克细胞50μL的比例用1×PBS(货号:PS110)洗涤2次;按每毫克细胞5~10μL的比例加入结合缓冲液 ,同时加入蛋白酶抑制剂(货号:GRF101),混匀后置于冰上孵育10min;离心收集上清液(4℃,14000×g,10min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存);
C. 贴壁细胞:移去培养基,按每1.0×105个细胞150μL的比例用1×PBS(货号:PS110)洗涤两次;用细胞刮刀刮落细胞,收集至1.5mL离心管内,按每1.0×105个细胞20~30μL的比例加入结合缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂(货号:GRF101),混匀后置于冰上孵育10min;离心收集上清液(4℃,14000×g,10min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存);
D. 大肠杆菌:离心收集大肠杆菌(4℃,12000×g,2min),弃上清后称重,按每克菌体(湿重)10mL的比例用1×PBS(货号:PS110)洗涤2次;按每克菌体(湿重)5~10mL的比例加入结合缓冲液 ,同时加入蛋白酶抑制剂(货号:GRF101),重悬菌体,超声裂解细胞,离心收集上清(4℃,12000×g,10min)。
E. 组织样品:建议使用免疫(共)沉淀裂解液(货号:PC105)进行裂解,具体操作如下:
⑴把组织剪切成细小的碎片;
⑵按照每20mg组织样本150~250μL的比例加入裂解液;
注意:如果样本裂解不充分,可以适当提高裂解液的用量;若需要高浓度的蛋白样品,也可适当降低裂解液的用量。
⑶用玻璃匀浆器匀浆,直至样本充分裂解;
注意:若组织样本非常细小,可以适当剪切后直接加入裂解液,通过强烈涡旋振荡使其裂解充分。
⑷充分裂解后,10,000~14,000×g离心3~5min,小心地将上清液(蛋白样品)移入新的离心管中,即可进行后续步骤。
磁珠预处理
2. 用移液器轻柔吹打Protein G琼脂糖磁珠,使其充分混匀,取所25~50 µL磁珠悬液置于 1.5 mL离心管中;
3. 加入 500 µL 结合缓冲液 或 1×PBS,用移液器轻柔吹打重悬磁珠,接着在磁力架上静置 1 min,待磁 珠吸附到离心管侧壁上后,吸弃上清;
4. 重复步骤 3 两次;;
抗体与磁珠结合
5. 稀释:用 结合缓冲液 或 1×PBS 稀释抗体样品至终浓度为 5~50 µg/mL,置于冰上备用;
6. 结合:将 500 µL 上步稀释好的抗体加入预处理后的磁珠中,置于翻转混合仪上孵育 ( 常温 2 h,4℃ 4~6 h 或过夜 ),接着在磁力架上静置 1 min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,把上清液转移到新的离心管中备用 ( 上清液可用于检测抗体是否存在残留 ),离心管中剩余的即为 抗体 - 磁珠复合物;
注意:结合过程中,磁珠可能会出现聚团或呈片状,属于正常现象,不会影响实验结果。
7. 洗涤:在上一步得到的 抗体 - 磁珠复合物 中加入 500 µL 结合缓冲液或 1×PBS,用移液器轻柔吹打重悬磁珠,接着在磁力架上静置 1 min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,吸弃上清。再重复此步骤两次;
抗原与抗体-磁珠复合物结合
8. 结合:向洗涤后的 抗体 - 磁珠复合物 中加入 500 µL 步骤 1 制备好的样品,置于翻转混合仪上孵育 ( 常温 2 h,4℃ 4~6 h 或过夜 ),接着在磁力架上静置 1 min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,吸弃上清,离心管中剩余的即为 抗原 - 抗体 - 磁珠复合物;
9. 洗涤:在上一步得到的 抗原 - 抗体 - 磁珠复合物 中加入 1 mL 洗涤缓冲液 或 1×PBS,用移液器轻柔吹打重悬磁珠,接着在磁力架上静置 1 min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,吸弃上清。再重复此步骤三次;
10. 洗脱:本操作说明书提供以下两种抗原洗脱方案,操作者可根据后期检测的需要选择不同的抗原洗 脱方法。
变 性 洗 脱:此方法洗脱的样品适用于 SDS-PAGE 检测。向步骤 9 洗涤后的 抗原 - 抗体 - 磁珠复合物 中加入 60 µL 1×SDS-PAGE 上样缓冲液 ( 货号:LT101) 混合均匀,100℃加热 10 min。待冷却后,将离心管在磁力架上静置 1 min,待磁珠吸附到 离心管侧壁上后,收集上清,进行 SDS-PAGE 检测。
非变性洗脱:此方法洗脱的样品保持原有的生物活性,可用于后期功能分析。向步骤 9 洗涤后的 抗原 - 抗体 - 磁珠复合物 中加入 25~50 µL 洗脱缓冲液,室温孵育 10 min; 将离心管在磁力架上静置 1 min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,收集上清液至新的离心管,并立即加入 1 µL 中和缓冲液将洗脱产物 pH 调节至中性,用于后期功能分析。
如何避免磁珠在储存或使用过程中可能出现的聚集情况?
答:磁珠应保存在 2~8℃,使用时应避免由于污染或干燥而导致的聚集。磁珠在低 pH 值的洗脱缓冲液中发生聚集属于正常现象,不影响磁珠的正常使用。在 结合 / 洗涤缓冲液 和 洗脱缓冲液 中添加终浓度为 0.1%(V/V) 的非离 子型去垢剂 ( 如 Triton X-100、Tween-20 或 NP-40) 可有效防止磁珠聚集。经过低 pH 值洗脱操作的磁珠可以用结合缓冲液洗涤至中性,然后用含有 0.1%(V/V)Tween-20 的 Tris buffer(pH7.5) 振荡重悬磁珠,并用超声波水浴处理 2 min,即可使磁珠恢复均匀状态,以上处理均不影响磁珠的抗体结合效率。珠在使用过程中出现结块现象?
答:磁珠在极少数情况下会出现结块现象,一般较难振荡打散,从而导致分布不均匀,这主要是因为磁珠在磁场中放置太久而牢固地结合在一起。用超声波水浴处理 2 min 即可打散磁珠,但要注意超声处理也会使磁珠在样品溶液中捕获的抗体脱落,因此磁珠在加样后洗脱前不宜使用该方法。如何提高抗体与磁珠结合效率?
答:磁珠抗体间的结合效率与抗体的种属来源及所属亚型有关,请确认抗体的类型与 Protein G 琼脂糖磁珠 配基的亲和效率。如抗体所属亚型与 Protein G 琼脂糖磁珠的亲和度较低,可以通过增加抗体与磁珠的孵育时间 (30~120 min)、提高结合缓冲液的 pH 值 (8~9) 及降低离子强度 (25~10 mM NaCl) 等方法提高亲和效率。如何提高磁珠在免疫沉淀反应中的特异性?
答:可以先将抗体与样品进行孵育,形成 抗体 - 抗原复合物 ,再用 Protein G 琼脂糖磁珠 捕获复合物。这种方法可以提高抗体与抗原的结合效率,并降低磁珠与样品接触的时间,从而提高沉淀产物的特异性。对于蛋白质 / 核酸共沉淀或染色质免疫共沉淀也推荐使用此法。如何解决磁珠易粘附管壁的现象?
答:建议使用低吸附率的耗材进行磁珠操作。另外,在缓冲液中添加 0.01%~0.1%(V/V) 的非离子型去垢剂 ( 如 Triton X-100、Tween-20 或 NP-40) 可以有效降低耗材对磁珠的粘附。1. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作;
2. 本产品仅限科研使用。
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