注意事项

1. 细胞生长状态是影响转染效率的关键！请务必选择传代次数相对较少，且生长状态良好的细胞进行转染实验；

2. 细胞培养基 pH 值偏低 (颜色偏黄) ，会显著降低转染效率；若此时不便完全换液，可选择半数换液法：即弃去一半上清，补加新鲜完全培养基；

3. 初次实验时，建议先在 96 孔板内摸索确定好最佳核酸 / 转染试剂比例，再于大体系中开展实验；

4. 本产品的推荐用量：

    ① DNA 或 mRNA：DNA 或 mRNA/ 转染试剂 = 1:4（μg/μL），但转染试剂使用量受细胞类型及其它实验因素影响，建议初次使用时可固定核酸用量 (如：96 孔板，推荐100ng) ，在 DNA或mRNA/转染试剂=1:0.5~1:7 (μg/μL) 的范围内，设置转染试剂用量梯度，以筛选出最佳转染用量；

    ② siRNA：在正式实验前，建议转染荧光标记的siRNA，通过流式或荧光显微镜考察细胞的siRNA摄取量，来确定合适的转染试剂 /siRNA比例以及siRNA用量。

5. DNA 或 mRNA 的初始储备浓度宜控制在 0.5~5 μg/μL 范围内；
siRNA 的推荐浓度为 15 μM，但仍需根据目标靶点的敲减难易程度，在 10-50 μM 范围内进行微调；
调整时，转染试剂与 siRNA 的用量比例尽量保持不变。

6. 个别细胞 (如HeLa、A549、THP-1、CHO-K1、HEK 293T等) 比较敏感，会因单位细胞DNA或siRNA摄入量过高而产生毒性 (非转染试剂原因) 。

    解决方案：① 可通过降低DNA或siRNA使用量，或提高细胞密度，或在转染6h后换液等操作，来降低细胞DNA或siRNA摄入量以降低单位毒性；同时，选择在转染后12~24h内检测细胞转染效果；

                      ② 若方法①仍无法解决问题，建议更换新细胞，或检测细胞是否有支原体等微生物感染，并加以清除后再开展实验。

    mRNA转染无此问题；

7. 本产品为无菌包装，无需过滤，请注意无菌取用；

8. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作；

9. 本产品仅限科研使用。